Recomandations pour les prélèvements

 Recommandations pour les prélèvements destinés aux  tests d'hémostase (selon les recommandations du GEHT 2007 ) 

  1-1 Choix des tubes :  

  1- 1 - a/ Matériaux :

Il est recommandé d’utiliser un tube à prélèvement sous vide.
Le verre siliconé et le PET « étanchéifié » sont également recommandables.
Les qualités du tube doivent être documentées et reconnues par un marquage CE.

  1-1 - b/ Anticoagulant

L’anticoagulant de référence est le citrate de sodium.
La concentration recommandée pour la coagulation est 0,109 mole (3,2%).
Le rapport anticoagulant/sang est de 1 volume d’anticoagulant pour 9 volumes de sang

(pour un tube de 5 ml : 0.5ml d'anticoagulant/4.5 ml de sang)

1-1 - c/ Volume d'air résiduel 

Le volume d’air résiduel, quelque soit la géométrie du tube, doit être de 20% maximum.

1-1 - d/ Hématocrite

En cas de modifications importantes de  l’hématocrite du patient  (> 55% ou < 30%) , il est important de le signaler au laboratoire d'hémostase.

  

  1 - 2 Prélèvement        

              1-2a/ Conditions optimales

- le matin, au repos depuis plus de 5 minutes, en position assise                                                                                           
- un repas léger sans matières grasses est autorisé
- tabac, exercice physique, caféine sont à éviter

N.B : Pour certaines explorations de la fibrinolyse, il faudra tenir compte de la variation circadienne de l'activité fibrinolytique plasmatique. Le prélèvement s'effectue à jeun, au repos, à distance d'une prise d'alcool.

1-2 b/ Taille optimale de l’aiguille 

Diamètre compris entre 19 G (1mm) et 22 G (0.7mm).
Prélèvements pédiatriques : aiguilles de diamètre 23 G acceptables.
Les aiguilles à ailettes de type « épicrânienne » peuvent être utilisées si la tubulure est courte (longueur < 6cm et volume mort < 150 µl). Elles sont recommandées chez l’enfant et chez l’adulte en  présence de veines fines ou difficiles.
Les systèmes de raccordement, type Luer®, sont à éviter en cas d’études spécialisées de l’hémostase.

 1-2 c/ Garrot 

Peu serré, maintenu moins d’1 minute.
Si les veines sont fines ou difficiles, le laisser en place en le serrant modérément.
Avec les tubes sous vide, dès que le sang afflue dans le tube, le garrot doit être desserré.

1-2 d/ Site de ponction

 Eloigné de toute perfusion par ponction veineuse franche.

1-2 e/ Ordre de prélèvement des tubes 

  1. tube sec sans activateur ou tube de « purge »,
  2. tube citraté (en 2éme position afin d'éviter toute "souillure" par le facteur tissulaire libéré par la lésion provoquée par l'aiguille.
  3. autres tubes (EDTA, héparine…)

1-3 Remplissage des tubes             

>90% recommandé, 80% acceptable

 1-3a / Transport et délai de réalisation des tests

Conditions de transport et de conservation

Dans les véhicules de transport, les échantillons doivent être en position verticale
La température de transport et de conservation des échantillons avant la réalisation des tests doit être comprise entre 18°C et 22°C.  Une température de +2°C - + 4°C est fortement déconseillée.

Délai entre le prélèvement et la réalisation des tests

Le délai est idéalement de 1 à 2 heures et ne doit pas dépasser 4 heures

 

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